ارزیابی حساسیت هشت رقم لوبیا (Phaseolus vulgaris L.) به پوسیدگی ریشه و طوقه ناشی از Rhizoctonia solani

نوع مقاله : پژوهشی- فارسی

نویسندگان

گروه گیاه‌پزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه لرستان، ایران

چکیده

قارچRhizoctonia solani Kühn  یکی از عوامل بیماری‌زای مهم در پوسیدگی ریشه لوبیا (Phaseolus vulgaris L.) محسوب می‌شود. به‌دلیل خاکزادبودن این قارچ بیمارگر، کنترل آن از طریق روش‌های شیمیایی به‌سادگی امکان‌پذیر نیست؛ ازاین‌رو، استفاده از راهکارهای مدیریتی جایگزین، به‌ویژه بهره‌گیری از ارقام مقاوم، می‌تواند در کاهش خسارت بیماری مؤثر باشد. هدف از این پژوهش، بررسی واکنش هشت رقم لوبیا در برابرR. solani  در شرایط گلخانه‌ای بود. در سال‌های زراعی ۱۴۰2-۱۴۰1، مزارع لوبیای استان لرستان پایش شد و از گیاهان دارای علائم مشکوک به آلودگی نمونه‌برداری انجام شد. جداسازی و خالص‌سازی جدایه‌های قارچی در شرایط آزمایشگاهی صورت گرفت و بیماری‌زایی آنها روی گیاهچه‌های لوبیا ارزیابی شد. جدایه‌ای انتخاب شد که بیشترین شدت بیماری‌زایی را داشت و براساس ویژگی‌های ریخت‌شناختی و توالی ناحیة فاصله ترانویسی‌شدة داخلی (ITS) شناسایی شد. اثر این جدایه بر ارقام مختلف لوبیا بررسی شد. آزمایش در قالب طرح کاملاً تصادفی با سه تکرار انجام شد. 30 روز پس از کاشت، صفات رشدی گیاه و شدت بیماری در ارقام مطالعه‌شده اندازه‌گیری شد. نتایج بررسی ویژگی‎های پرگنه، رشد، خصوصیات ریخت‎شناختی و همچنین مطالعات مولکولی نشان دادند قارچ جداشده از ریشه و طوقه لوبیا R. solani است. نتایج نشان دادند شدت بیماری‎زایی در ارقام مختلف بین 37/۳ تا ۵ متغیر بود. هیچ‌یک از ارقام لوبیا مقاومت کاملی در برابرR. solani  نشان ندادند و همگی در گروه‌های حساس یا نیمه‌حساس طبقه‌بندی شدند. در این میان، لوبیا چیتی رقم تلاش با میانگین شدت بیماری‌زایی 37/3 نسبت به سایر ارقام مقاومت بیشتری (نیمه‌حساس) نشان داد.

کلیدواژه‌ها

موضوعات


عنوان مقاله [English]

Evaluation of the susceptibility of eight bean (Phaseolus vulgaris L.) cultivars to root and crown rot caused by Rhizoctonia solani

نویسندگان [English]

  • Mostafa Darvishnia
  • Zahra Mirzaeipour
  • Parasto Karooei
Department of Plant Protection, Faculty of Agriculture, Lorestan University, Khorramabad, Iran.
چکیده [English]

The fungus Rhizoctonia solani Kühn is considered one of the major pathogens causing root rot in the common bean (Phaseolus vulgaris L.). Due to the soil-borne nature of the pathogen, its control through chemical methods is difficult to achieve. Therefore, the use of alternative management strategies, particularly the deployment of resistant cultivars, can be effective in reducing the impact of the disease. The objective of this study was to investigate the response of eight bean cultivars to R. solani under greenhouse conditions. In the 2022–2023 crop years, bean fields in Lorestan Province were monitored, and samples were collected from plants showing symptoms suggestive of infection. Isolation and purification of fungal isolates were conducted under laboratory conditions, and their pathogenicity was evaluated on bean seedlings. The isolate demonstrating the highest pathogenicity was selected and identified based on its morphological features and sequencing of the internal transcribed spacer (ITS) region. The impact of this isolate on different bean cultivars was examined. The experiment was conducted in a completely randomized design with three replications. Thirty days after planting, plant growth parameters and disease severity were measured in the studied cultivars. Results from colony characteristics, growth, morphological features, and molecular studies confirmed that the fungus isolated from the roots and crowns of the bean plants was R. solani. The findings revealed that the severity of pathogenicity among the different cultivars ranged from 3.37 to 5. None of the bean cultivars exhibited complete resistance to R. solani, and all were classified as either susceptible or moderately susceptible. Among them, the 'Talash' cultivar of pinto bean, with an average disease severity of 3.37, demonstrated relatively higher resistance (moderate susceptibility) compared to the other cultivars.

کلیدواژه‌ها [English]

  • Root And Crown Rot
  • Phaseolus Vulgaris
  • Disease Severity

مقدمه

حبوبات به‌دلیل اهمیت تغذیه‌ای و زیست‌محیطی نقش حیاتی در تغذیه انسان و پایداری اکوسیستم‎های کشاورزی دارند. این گیاهان منبع اصلی پروتئین‌های گیاهی هستند که به رفع چالش امنیت غذایی برای جمعیت روبه‌رشد کمک می‌کنند و به‌عنوان گزینه‌ای اقتصادی و مقرون‌به‌صرفه در تأمین نیازهای تغذیه‌ای جهانی عمل می‌کنند. افزون بر این، اهمیت حبوبات تنها به تغذیه محدود نمی‌شود؛ آنها به‌دلیل توانایی هم‌زیستی با ریزوبیوم‌ها، نیتروژن جوی را تثبیت و اکوسیستم‌های کشاورزی را غنی‌سازی می‌کنند. این ویژگی به بهبود جذب آب و مواد مغذی، کاهش وابستگی به کودهای شیمیایی و کاهش اثرات زیست‌محیطی مانند تغییرات آب‌وهوایی کمک می‌کند (1، 2).

در این میان لوبیا معمولی (Phaseolus vulgaris L.) به‌عنوان مهم‌ترین محصول حبوبات، حدود ۸۵ درصد تولید جهانی را به خود اختصاص داده است و سالانه بیش از ۲۷ میلیون تن تولید می‌شود (3). این گیاه با سطح زیر کشت حدود 37750 هکتار، تغذیه بیش از ۳۰۰ میلیون نفر را تأمین می‌کند؛ به‌ویژه در جوامعی که اقتصاد آنها وابسته به کشاورزی است (4، 5). با این حال، تولید پایدار این گیاه به‌شدت متأثر از تنش‌های زیستی متعددی ازجمله بیماری‌های گیاهی است که بیماری‌های خاک‎زاد، به‌ویژه پوسیدگی ریشه، یکی از چالش‌های عمده در کشت لوبیا محسوب می‏شود (6). پوسیدگی ریشه لوبیا یک بیماری کمپلکس است که در آن عوامل بیماری‎زا و عوامل محیطی مختلف در ایجاد آن نقش دارند. علاوه بر این، تنوع ژنتیکی میزبان و بیمارگر مستلزم طیف وسیعی از پاسخ‌ها است که در آن حساسیت یا مقاومت ممکن است حاصل شود (7).

Rhizoctonia solani یک قارچ نکروتروف خاکزاد با پراکنش جهانی است که باعث بیماری مهم اقتصادی در لوبیا در سراسر جهان می‎شود و نیز سبب ایجاد مرگ گیاهچه، پوسیدگی بذر، پوسیدگی ریشه و طوقه و ایجاد زخم‎های فرورفته قهوه‎ای مایل به قرمز با طیف وسیعی از اندازه‎ها و زردی و کم‌رشدی در بخش‎های هوایی در لوبیا می‎شود (8، 9). ریسه‎های قارچی هم به‌صورت درون‌سلولی و هم برون‌سلولی به میزبان نفوذ می‎کنند و چندین آنزیم هیدرولیتیک تولید و ترشح می‎کنند که دیواره سلولی گیاه را تخریب می‎کند و ورود پاتوژن را تسهیل می‎کند (7، 10). این قارچ بیمارگر بر جذب آب و مواد مغذی تأثیر منفی می‎گذارد و همچنین باعث کاهش مستقیم توده‎زیستی و آسیب به محصول می‎شود، به‌شدت بر عملکرد محصول لوبیا تأثیر می‎گذارد و منجر به کاهش تا 100 درصد عملکرد دانه می‎شود (11، 12). گسترده‌بودن دامنه میزبانی، انتشار وسیع جغرافیایی، بالابودن قدرت بیماری‌زایی، دوام و قدرت بقا ساپروفیتی، سبب اهمیت این قارچ از نظر بیماری‌زایی می‌شود و از طرفی، پیچیدگی محیط خاک و عدم کارایی روش‎های متداول کنترل شیمیایی، مدیریت بیماری‎های ناشی از آن را مشکل می‎کند (8).

در این زمینه روش‌های مدیریت تلفیقی ازجمله تناوب زراعی، ضدعفونی خاک، استفاده از کنترل‌های شیمیایی و بیولوژیک و بهره‌گیری از ارقام مقاوم برای کنترل بیماری‎های گیاهی استفاده می‎شود. در این میان، استفاده از ارقام مقاوم به‌عنوان مؤثرترین، کم‌هزینه‌ترین و پایدارترین روش مدیریت بیماری مطرح است. این رویکرد ضمن کاهش خسارات، هزینه‌های مبارزه شیمیایی را نیز کاهش می‌دهد و از آلودگی محیط زیست جلوگیری می‌کند (13).

مطالعات متعددی برای کشف ژنوتیپ‎های مقاوم به بیمارگرهای مختلف ازجمله قارچ R. solani در میزبان‎های متعددی انجام شده است؛ ازجمله نتایج یک پژوهش با هدف پاسخ ژنوتیپی پنجاه لاین لوبیای معمولی (سفید کوچک، قرمز کوچک، اسنپ، سیاه، چیتی، قرمز روشن و غیره) به R. solani  نشان دادند چندین ژنوتیپ لوبیا که بیشتر منشأ گرمسیری داشتند، مقاومت بالایی به R. solani داشتند (14). نتایج تحقیقی که به‌منظور بررسی مقاومت 46 ژنوتیب لوبیا به قارچ بیمارگر R. solani صورت گرفت نشان دادند تعداد 20 ژنوتیب به بیماری پوسیدگی ریزوکتونیایی ریشه مقاومت نشان دادند؛ ولی در شرایط آزمایشگاهی این ژنوتیب‎ها هیچ‌گونه مقاومتی نشان ندادند (15).

نتایج یک مطالعه که به‌منظور ارزیابی مقاومت 6 رقم لوبیا در برابر بیمارگر R. solani در شرایط گلخانه انجام شد، نشان دادند هیچ‌کدام از ارقام در مقابل بیماری پوسیدگی ریزوکتونیایی ریشه مقاوم نبودند. رقم Medalist نسبت به ارقام بررسی‌شده حساسیت کمتری داشت (16).

طی پژوهشی که به‌منظور بررسی بیماری‎زایی چند جدایه R. solani روی ارقام اصلاح‌شدة لوبیای چیتی، قرمز، سفید، سبز و چشم بلبلی انجام شد. مشخص شد هیچ‌کدام از ارقام، مقاومت کاملی نسبت به این بیماری ندارند و تمامی ارقام به این بیماری حساس و نیمه‌حساس هستند و فقط دو رقم لوبیای قرمز گلی و قرمز صیاد نسبت به بیماری نیمه‌مقاوم بودند (17). در ارزیابی واکنش ارقام مختلف لوبیا به قارچ بیمارگر R. solani مشخص شد رقم صدری مقاوم‎ترین رقم نسبت به این قارچ بود (18).

باوجود پیشرفت‎های اخیر، شکاف‏های دانشی درخور توجهی در زمینة پاسخ ارقام مختلف لوبیا به R. solani، در مناطق مختلف ایران (ازجمله استان لرستان به‌ویژه شهرستان الیگودرز و ازنا به‌عنوان کانون‎های کشت لوبیا) وجود دارد؛ بنابراین، با توجه به اینکه تاکنون مطالعه جامعی دربارة تأثیر قارچ بیمارگر R. solani روی ارقام رایج کشت لوبیا در استان لرستان صورت نگرفته است، هدف اصلی این مطالعه، ارزیابی مقاومت ارقام مختلف لوبیا در برابر بیماری پوسیدگی ریشه ناشی ازRhizoctonia solani  بود. همچنین این تحقیق به شناسایی ارقام مقاوم به‌منظور استفاده در مدیریت پایدار بیماری برای کاهش خسارات ناشی از آن می‌پردازد. دستیابی به این هدف گامی کلیدی در کاهش وابستگی به روش‎های شیمیایی و افزایش تاب‎آوری اکوسیستم‎های زراعی منطقه خواهد بود.

مواد و روش‌ها

نمونه‏برداری، جداسازی و شناسایی قارچ عامل بیماری

نمونه‌برداری از مزارع لوبیا در مناطق مختلف استان لرستان، از مرحله دو تا سه‌برگی شدن گیاه تا زمان تشکیل دانه در نیام، انجام شد. این نمونه‌برداری از گیاهانی صورت گرفت که علائم مشکوک به آلودگی قارچ Rhizoctonia، مانند پوسیدگی ریشه و طوقه، بوته‌میری و وجود شانکر در ناحیه طوقه را نشان می‌دادند. بوته‌های مشکوک از ۵۰ مزرعه لوبیا در سطح استان، به‌ویژه شهرستان‌های ازنا و الیگودرز (به‌دلیل سطح بالای زیرکشت لوبیا در این مناطق)، جمع‌آوری شدند. از طوقه و ریشه نمونه‎ها قطعات کوچکی به ابعاد نیم تا یک سانتی‏متر جدا شد. این قطعات به مدت یک تا سه دقیقه در محلول یک درصد هیپوکلریت سدیم تجاری قرار گرفتند و سه مرتبه با آب مقطر استریل شست‌وشو شدند. بافت‎های ضدعفونی‌شده به تشتک‎های پتری دیش حاوی محیط کشت PDA منتقل شدند. تشتک‎های پتری دیش به مدت 48-24 ساعت در انکوباتور در دمای 2±25 درجه سانتی‎گراد قرار گرفتند. با مشاهده اولین آثار رشد ریسه در اطراف بافت آلوده، جدایه‎ها به روش نوک ‎ریسه روی محیط کشت آب - آگار دو درصد خالص‎سازی شدند. شناسایی قارچ‎های جداشده با توجه ‌به ویژگی‎های پرگنه و ریخت‎شناختی آنها انجام گرفت که توسط منابع (19-22) توصیف شده است. در مجموع 12 جدایه از قارچ Rhizoctonia جداسازی شدند و سپس جهت انتخاب جدایه برتر تست بیماری‌زایی در شرایط گلخانه روی گیاه لوبیا انجام شد (22). جدایه‎ای که بیشترین شدت بیماری‌زایی را داشت، برای انجام تست اصلی، انتخاب و براساس ویژگی‎های مولکولی ناحیه ITS با جفت پرایمرهای ITS1 و ITS4 شناسایی شد (23).

ارقام لوبیا استفاده‌شده

در این تحقیق میزان مقاومت 8 رقم رایج ازجمله لوبیا چیتی ارقام تلاش، غفار و کوشا، لوبیا سفید ارقام الماس و شکوفا، لوبیا قرمز ارقام افق، دادفر و یاقوت (ارقام رایج قابل کشت در منطقه) مطالعه شدند. ارقام لوبیا مطالعه‌شده از ایستگاه تحقیقاتی لوبیا خمین متعلق به مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان مرکزی تهیه شدند.

 تهیه مایه تلقیح قارچ بیمارگر

مایه تلقیح قارچ Rhizoctonia به روش (22) تهیه شد. به این صورت که مقدار 100 گرم دانه گندم درون یک کیسه پلاستیکی مقاوم به گرما، ریخته و تقریباً 100 میلی‎لیتر آب مقطر استریل اضافه شد. پس از مسدودکردن در آن، در اتوکلاو در دمای 121 درجه سانتی‎گراد و فشار 5/1 اتمسفر به مدت 20 دقیقه در دو روز متوالی سترون شد. سپس سه تا پنج دایره به قطر 5 میلی‎متر از حاشیه کشت تازه و درحال رشد Rhizoctonia درون کیسه‌های حاوی دانه گندم، اضافه و در دمای 25 درجه سانتی‌گراد برای 15 روز نگهداری ‎شدند.

بررسی حساسیت ارقام لوبیا به بیمارگر R. solani در شرایط گلخانه

ابتدا بستر کشت (ترکیبی از ماسه، خاک و خاک‌برگ به نسبت 1:1:1) در دو روز متوالی به مدت 30 دقیقه و دمای 121 درجه سانتی‎گراد در فشار 5/1 اتمسفر سترون شد (24، 25). همچنین ضدعفونی گلدان‎های پلاستیکی با استفاده از فرمالین 5 درصد انجام شد (26). همزمان با اضافه‌کردن خاک به گلدان‎ها با ابعاد 13×17 سانتی‎متر، بذرها پس از ضدعفونی با هیپوکلریت ‎‎سدیم یک درصد به مدت یک دقیقه و 3 بار شست‌وشو با آب مقطر استریل در عمق 5-3 سانتی‎متری خاک کاشته شدند و دو عدد دانه گندم کلونیزشده با قارچ R. solani به هر گلدان اضافه شد (2). همچنین بذر ضدعفونی‌شده همراه با دو عدد بذر گندم تلقیح‌نشده به‌عنوان شاهد در نظر گرفته شد. گلدان‎ها در شرایط کاملاً تصادفی روی سکوهای گلخانه در شرایط یکسان و دمای 30-25 درجه سانتی‎گراد قرار گرفتند. برای هر تیمار سه تکرار استفاده شد و گلدان‎ها به فاصله 2-1 روز آبیاری شدند. 25-20 روز پس از کاشت، گیاهان از خاک خارج شدند. ابتدا نمونه‎های گیاهی به‌صورت جداگانه زیر جریان ملایم آب به‌طور کامل شسته شدند. سپس شاخص‎های رشدی شامل ارتفاع بوته، طول ریشه، وزن‌ تر و خشک بوته و وزن‌تر و خشک ریشه تعیین شدند (برای اندازه‎گیری وزن خشک گیاهان در آون با دمای 65 درجه سانتی‎گراد به مدت 72 ساعت تا رسیدن به وزن ثابت نگهداری شدند). همچنین شدت بیماری‎زایی و درصد شدت بیماری‌زایی Rhizoctonia با استفاده از روش نمره‎دهی به شرح زیر ثبت شد:

0= گیاه به‌خوبی رشدیافته بدون علائم بیماری. 1= بدون علائم قابل مشاهده در قسمت‎های هوایی، 25 درصد از ریشه‎ها تغییر رنگ داده‌اند. 2= گیاه کمی کوتاه، نکروز سیاه روی پایه دمبرگ، 26 تا 50 درصد ریشه‎ها تغییر رنگ داده‌اند. 3= گیاه کوتاه، نکروز سیاه روی پایه دمبرگ، زردشدن و مرگ برگ‎های بیرونی، 51 تا 75 درصد ریشه‎ها تغییر رنگ داده‎اند. 4= گیاه به‌شدت کوتاه، برگ‌های بیرونی فروریخته، برگ‌های جوان‌تر سبز مایل به آبی و پژمرده می‌شوند، بیش از 75 درصد ریشه‌ها تغییر رنگ داده‌اند. 5= مرگ کامل گیاه. شاخص شدت بیماری براساس فرمول زیر محاسبه شد:

DSI = Σ ((Si × Ni) / (Nt × 5)) × 100

که در این فرمول DSI شاخص شدت بیماری،Si  شدت بیماری، Ni تعداد گیاهان،Nt  تعداد کل گیاهان مورد بررسی است.

شدت بیماری براساس مقیاس یک تا پنج به‌ترتیب نشان‌دهندة واکنش‎های ایمن، مقاوم، نیمه‌مقاوم، نیمه‌حساس و حساس است (27).

آنالیز آماری

داده‎های به‌دست‌آمده با استفاده از نرم‌افزار SAS نسخه 1/9 تجزیه و ‌تحلیل شدند و میانگین‎ها با استفاده از آزمون توکی در سطح احتمال پنج درصد (P<0.05) مقایسه شدند.

 نتایج

براساس نتایج به‌دست‌آمده مهم‌ترین علائم بیماری پوسیدگی رایزوکتونیایی ریشه و طوقه در گیاهان لوبیا شامل پوسیدگی بذر، کم‌رشدی و به‌مرور زردی قسمت‎های هوایی گیاه، وجود زخم‎های قهوه‎ای روشن تا قهوه‎ای تیره و گاهی قرمز روی طوقه و ریشه است که زخم‎ها گاهی اطراف ریشه را به‌طور کامل فرا گرفته‌اند که در این حالت بافت طوقه و ریشه کاملاً پوسیده شده بود و درنهایت مرگ گیاهچه مشاهده شد (شکل 1، A). طبق بررسی‎های اولیه براساس منابع و کلیدهای شناسایی مربوطه، در مجموع 12 جدایه Rhizoctonia از گیاهان لوبیا جمع‎آوری‌شده، جداسازی شدند؛ بعد از تست بیماری‌زایی جدایه‎های به‌دست‌آمده، یک جدایه که بیشترین شدت بیماری‌زایی را نسبت به سایر جدایه‎ها داشت برای انجام تست اصلی انتخاب شد.

شکل 1- (A) علائم بیماری پوسیدگی ریزوکتونیایی ریشه و طوقه روی گیاه لوبیا B، خصوصیات ریختشناختیRhizoctonia solani جداشده از لوبیا (a) پرگنه قارچ R. solani (b) انشعابات ریسه و باریک‎شدگی ابتدای انشعاب و دیواره عرضی بالای باریک‌شدگی، (c) سلول‎های مونیلوئید، (d) هسته‎های رنگ‎آمیزی‌شده. اندازه‎ها ‎ 10میکرومتر.

Figure 1- (A) Symptoms of Rhizoctonia root and collar rot on the bean plant. (B) Morphological characteristics of R. solani isolated from bean: (a) Colony of R. solani, (b) Hyphal branching with constriction at the base and a septum above the constriction, (c) Monilioid cells, (d) Stained nuclei. Scale bar: 10 µm.

شکل 2- تبارنمای ترسیم‌شده مربوط به جدایه‎های Rhizoctonia براساس توالی‎های ITS rDNA به روش Neighbor-joining با استفاده از نرم‌افزار MEGA11 با 1000 تکرار بوت استرپ. آرایه بولدشده مربوط به جدایة این مطالعه است. تبارنما با استفاده از Athelia rolfsii FSR-052 (AY684917.1) ریشه‎دار شده است.

Figure 2- The phylogenetic tree was constructed using the Neighbor-Joining method based on ITS rDNA sequences of Rhizoctonia isolates. The analysis was performed with MEGA11 software, incorporating 1,000 bootstrap replicates to assess the reliability of the tree branches. The isolate from this study is highlighted in bold within the tree. The tree was rooted using Athelia rolfsii strain FSR-052 (GenBank Accession No. AY684917.1) as the outgroup.

با بررسی و مطالعه ویژگی‎های پرگنه، رشد و همچنین خصوصیات ریخت‎شناختی جدایه به‌دست‌آمده از لوبیا ازجمله سرعت رشد (سریع‎الرشد بود و بعد از 4 روز ظروف تشتک پتری دیش 9 سانتی‎متری را در دمای 25 درجه سانتی‎گراد به‌طور کامل پوشش داد)، الگوی رشد پرگنه (به‌صورت دوایر متحدالمرکز)، رنگ پرگنه قارچ روی محیط PDA (ابتدا سفید و به‌مرور زمان تغییر رنگ به قهوه‎ای)، تشکیل سختینه، قطر ریسه اصلی (بین 11-5 میکرومتر با انشعابات قائمه)، باریک‌شدگی [1] در قائده انشعابات، وجود دیوارة عرضی کمی بالاتر از محل باریک‌شدگی، عدم وجود کنیدیوم و قوس اتصال، سلول‎های مونیلیوئید به‌صورت زنجیره‎های ساده یا منشعب و همچنین پس از رنگ‌آمیزی ریسه­ها با محلول سافرانین قلیایی در بررسی­های میکروسکوپی دو تا چهار هسته در هر سلول مشاهده شدند (شکل 1، B).

همچنین برای تأیید تشخیص گونه نتایج مطالعات مولکولی با تکثیر DNA استخراج‌شده از این جدایه از ناحیه ITS با استفاده از جفت پرایمرهای ITS1 و ITS4   باندهای 550 و 680 جفت‌باز را نشان دادند که توالی آن 96 تا 98 درصد با توالی‎های  R. solaniموجود در بانک ژن شباهت داشت؛ بنابراین، قارچ جداشده از ریشه و طوقه لوبیا به‌عنوان Rhizoctonia solani با کد دستیابی PQ276725 شناسایی و در بانک ژن ثبت شد (شکل 2).

نتایج تجزیه واریانس دادههای حاصل از شدت بیماری ارقام مختلف لوبیا تحت‌تأثیر قارچ بیمارگر R. solani نسبت به شاهد در سطح احتمال پنج درصد (P<0.05) معنی‌دار بود. بررسی مقایسه میانگین اثر متقابل قارچ R. solani و ارقام مختلف لوبیا نشان داد شدت بیماریزایی 5-37/3 و درصد شدت بیماری‌زایی 100-5/62 درصد متفاوت بود (شکل 3). کمترین شدت بیماری‌زایی با شدت 37/3 و میانگین درصد شدت بیماری‌زایی 5/62 درصد مربوط به لوبیا چیتی رقم تلاش بود و بیشترین شدت بیماری‌زایی مربوط به لوبیا قرمز رقم یاقوت، لوبیا سفید رقم دادفر و لوبیا سفید رقم الماس با شدت بیماری‌زایی 5 و میانگین درصد شدت بیماری‌زایی 100 درصد بود. نتایج نشان دادند آلودگی به قارچ R. solani باعث پوسیدگی بذر و مرگ گیاهچه قبل و بعد از خروج گیاهچه در این ارقام شد. شدت بیماری در ارقام کوشا، غفار و شکوفا به‌ترتیب 62/4، 75/4 و 87/4 بود (جدول 1، شکل 3). 

شکل 3- درصد شدت بیماری در ارقام مختلف لوبیا در پاسخ به آلودگی با Rhizoctonia solani

Figure 3- Percentage of disease severity in different bean cultivars in response to infection with Rhizoctonia solani.

همچنین نتایج به‌دست‌آمده در بررسی تأثیر گونه R. solani بر صفات رشدی ارقام مختلف لوبیا نشان دادند این گونه باعث کاهش چشمگیری در همه صفات رشدی در ارقام مطالعه‌شده نسبت به شاهد (در سطح 5 درصد) شد (جدول 1).

نتایج مقایسه میانگینها نشان دادند بیشترین کاهش وزن خشک اندام هوایی مربوط به رقم الماس (کاهش 98 درصدی) بود که نسبت به شاهد اختلاف معنیداری داشتند. کمترین کاهش وزن خشک اندام هوایی مربوط به رقم تلاش (کاهش 97/45 درصدی نسبت به شاهد) بود (جدول 1، شکل 4).

طبق نتایج به‌دست‌آمده تمام ارقام بررسی‌شده در برابر آلودگی با R. solani به‌طور چشمگیری کاهش وزن در ریشه داشتند. بیشترین کاهش وزن خشک ریشه در بین ارقام بررسی‌شده در تیمار با قارچ R. solani در رقم الماس (کاهش 97 درصدی نسبت به شاهد) ثبت شد و رقم تلاش کمترین کاهش وزن را بر اثر آلودگی به قارچ R. solani (کاهش 64 درصدی نسبت به شاهد) داشت (جدول 1، شکل 4).

نتایج مقایسه میانگینها نشان دادند بیشترین کاهش ارتفاع بوته مربوط به رقم الماس (کاهش 94/86 درصدی نسبت به شاهد) و کمترین کاهش ارتفاع بوته در برابر آلودگی R. solani مربوط به رقم تلاش (کاهش 16/62 درصدی نسبت به شاهد) بود. بیشترین کاهش طول ریشه در رقم الماس (کاهش 78/73 درصدی نسبت به شاهد) و کمترین کاهش طول ریشه در رقم غفار (کاهش 11/33 درصدی نسبت به شاهد) ثبت شد (جدول 1، شکل 4).

جدول 1- مقایسه میانگین دادههای حاصل از شدت بیماری و صفات رشدی ارقام مختلف لوبیا تلقیح‌شده با قارچ Rhizoctonia solani و مقایسه با شاهد.

Table 1- Comparison of mean data on disease severity and growth traits of different bean cultivars inoculated with Rhizoctonia solani in comparison to the control.

ارقام لوبیا

شدت بیماری

وزن خشک بخش هوایی (گرم)

وزن خشک ریشه (گرم)

ارتفاع بخش هوایی (سانتی‏متر)

طول ریشه (سانتی‏متر)

شاهد

تلقیح شده

شاهد

تلقیح شده

شاهد

تلقیح شده

شاهد

تلقیح شده

الماس

00/0 ± 5 a

00/0 ± 48/1 d

20/0 ± 029/0 c

00/0 ± 84/0 ab

00/0 ± 033/0 a

94/1 ± 92/37 a

64/1 ± 95/4 cd

29/0 ± 00/14 a

55/0 ± 67/3 c

دادفر

00/0 ± 5 a

00/0 ± 63/1 bcd

00/0 ± 052/0 c

00/0 ± 88/0 ab

00/0 ± 046/0 a

29/2 ± 38/34 a

41/0 ± 56/5 cd

27/1 ± 00/12 b

25/0 ± 45/6 bc

غفار

46/0 ± 75/4 a

13/0 ± 70/1 bc

20/0 ± 33/0 b

00/1  ± 96/0 ab

50/0 ± 25/0 a

47/1 ± 00/38 a

9/2 ± 42/10 ab

68/0 ± 95/14 a

66/0 ± 00/10 a

کوشا

51/0 ± 62/4 a

47/0 ± 92/1 a

40/0 ± 36/0 b

00/0 ± 1 a

12/0 ± 18/0 a

89/2 ± 38/36 a

55/0 ± 23/9 bc

56/0 ± 25/14 a

70/1 ± 85/5 bc

افق

35/0 ± 87/4 a

61/0 ± 74/1 ab

00/0 ± 10/0 c

00/0 ± 71/0 b

00/0 ± 067/0 a

58/1 ± 25/36 a

53/1 ± 74/8 bcd

37/0 ± 00/15 a

92/0 ± 00/6 bc

شکوفا

35/0 ± 87/4 a

33/0 ± 54/1 cd

00/0 ± 28/0b

00/0 ± 96/0 ab

19/0 ± 95/0 a

66/2 ± 25/21 b

47/0 ± 12/4 d

58/0 ± 27/12 b

25/1 ± 00/4 c

تلاش

54/0 ± 37/3 b

22/0 ± 74/1 ab

17/0 ± 67/0 a

00/0 ± 94/0 ab

34/0 ± 36/0 a

61/2 ± 37/36 a

57/2 ± 75/13 a

9/0 ± 32/14 a

90/0 ± 82/7 ab

یاقوت

00/0 ± 5 a

30/0 ± 90/1 a

00/0 ± 061/0 c

27/0 ± 1 a

15/0 ± 081/0 a

60/1 ± 17/32 a

47/1 ± 00/6 bcd

32/0 ± 00/14 a

1/2 ± 62/5 bc

٭Means with the similar letters within each row were not significantly different (P<0.05).

میانگین‎های با حروف یکسان در هر ردیف، با هم تفاوت معنی‎داری ندارند (P<0.05).

 شکل 4- علائم آلودگی ازجمله پوسیدگی بذر، مرگ گیاهچه، کم‌رشدی، وجود زخم و همچنین شدت بیماری‌زایی قارچ بیمارگر Rhizoctonia solani جداشده روی هشت رقم لوبیا بررسی‌شده و مقایسه با شاهد.

Figure 4- Symptoms of infection, including seed rot, seedling death, stunted growth, the presence of wounds, as well as the severity of pathogenicity of the isolated Rhizoctonia solani fungus on eight bean cultivars were investigated and compared with the control.

 بحث

در این مطالعه از گیاهان لوبیا مشکوک به آلودگی، قارچ بیمارگر R. solani، جداسازی و براساس ترکیب ویژگی‎های ریخت‎شناختی و آنالیز مولکولی ناحیه ITS شناسایی شد. خصوصیات ذکرشده برای این جدایه با مشخصات ذکرشده توسط دیگر محققان برای گونه R. solani انطباق داشت (20-22). آزمون بیماری‌زایی نشان داد این قارچ یک بیمارگر پوسیدگی ریشه و طوقه لوبیا بود و علائم شدید بیماری ازجمله پوسیدگی بذر، مرگ گیاهچه قبل و بعد از جوانه‎زنی، زردی، کم‌رشدی و زخم روی طوقه و ریشه را ایجاد کرد و شدت بیماری‌زایی بالایی روی ارقام مختلف لوبیا داشت؛ به‌طوری‌که حدود 30 روز پس از کاشت همه گیاهان به‌طور کامل از بین رفتند. این نتایج نشان می‎دهند R. solani می‎تواند به‌عنوان یک عامل بیماری‎زای بالقوه مهاجم در مزارع لوبیا ایران در نظر گرفته شود. با توجه ‌به نتایج مطالعات قبلی، بیش از یک گونه بیمارگر می‎تواند عامل پوسیدگی ریشه و طوقه لوبیا در ایران باشد (18، 28). طبق این مطالعه و سایر بررسی‎ها در نقاط دیگر ایران به نظر می‎رسد R. solani یکی از عوامل اصلی بیماری پوسیدگی ریشه و طوقه لوبیا در ایران است (17، 18). وقوع بیماری ناشی از R. solani در گیاهان لوبیا در اکثر مناطق تحت کشت این محصول گزارش شده است و اکثر ارقام تجاری لوبیا مستعد ابتلا به این بیماری هستند (7، 11، 12). قارچ بیمارگر R. solani تهدیدی جدی برای تولید تجاری لوبیا در سرتاسر جهان است و با خسارات اقتصادی شدیدی همراه است (2).

مطابق نتایج به‌دست‌آمده هیچ‌یک از ارقام بررسی‌شده در این مطالعه نسبت به بیماری پوسیدگی رایزوکتونیایی مقاومت نشان ندادند. مشخص شد ارقام مختلف لوبیا به قارچ بیمارگر R. solani حساس هستند یا مقاومت محدودی از خود نشان می‌دهند. براساس نتایج این پژوهش قارچ R. solani از پتانسیل بالایی در ایجاد بیماری و درنتیجه ایجاد خسارت روی گیاهچه لوبیا قبل و بعد از سبزشدن برخوردار است. این بیماری در مرحله بذر و گیاهچه با توجه به ارقام مختلف می‎تواند خسارت ایجاد کند. با توجه به نتایج این تحقیق و مطالعات قبلی به نظر می‎رسد مقاومت لوبیا به Rhizoctonia یک مقاومت پیچیده و پلی‏ژنتیک است و تحت‌تأثیر عوامل محیطی و ژنتیکی قرار دارد و این موضوع از مشکلات اصلی تهیه رقم مقاوم به شمار می‎آید (17، 29). نتایج کاشانی و بهلولی (2013) در بررسی مقایسه 15 رقم اصلاح‌شدة لوبیا چیتی، قرمز، سفید، سبز و چشم بلبلی در برابر 5 جدایه R. solani در شرایط گلخانه نشان داد هیچ‌کدام از این ارقام لوبیای بررسی‌شده مقاومت کاملی به این بیماری نداشتند و تمامی این ارقام به این بیماری حساس و نیمه‌حساس و دو رقم لوبیای قرمز گلی و لوبیای صیاد نسبت به بیماری نیمه‌مقاوم بودند؛ بنابراین، نتایج پژوهش حاضر با نتایج کاشانی و بهلولی (2013) مطابقت دارد؛ زیرا در هر دو مطالعه هیچ‌کدام از ارقام بررسی‌شده مقاومت کاملی در برابر R. solani نشان ندادند (17).

در این مطالعه، لوبیا چیتی رقم تلاش کمترین شدت بیماری (37/3) را نشان داد؛ درحالی‌که برخی از پژوهش‌ها (مانند 18) نشان داده‌اند رقم صدری مقاوم‌ترین رقم لوبیا در برابر R. solani بوده است. این تفاوت می‌تواند ناشی از تنوع ژنتیکی میزبان، تفاوت در شرایط محیطی یا تغییرات در نژادهای بیمارگر باشد.

مقایسه نتایج حاصل از ارتفاع گیاهچه در ارقام مختلف و مقایسه هر رقم با شاهد مربوطه نشان داد رقم الماس کمترین ارتفاع را نسبت به شاهد خود داشت. مطابق نتایج این پژوهش و تحقیقات قبلی، علت کاهش ارتفاع گیاه درنتیجه کاهش فاصله بین گره‎ها و کوتاه‌شدن ساقه، بر اثر قارچ بیماری‌زا بود (18).

بیشترین وزن تر و خشک بخش‌های هوایی گیاهچه‎های بیمار در تیمار رقم تلاش مشاهده شد. علت این مسئله بیماری‌زایی کمتر این قارچ روی این رقم لوبیا نسبت به سایر ارقام بررسی‌شده بود.

در بین ارقام لوبیای بررسی‌شده، بیشترین کاهش طول ریشه در رقم الماس (کاهش 78/73 درصدی نسبت به شاهد) ثبت شد. نتایج همچنین نشان دادند آلودگی ریشه گیاهچه تأثیر به‌سزایی در کاهش وزن تر و خشک قسمت‎های مختلف ارقام بررسی‌شده داشته است. برخی از پژوهش‎ها گزارش کرده‎اند با افزایش شدت آلودگی و خسارت واردشده به ریشه و طوقه توسط قارچ Rhizoctonia، سیستم ریشه گیاه رشد کمتری داشته است و این کاهش باعث ایجاد اختلال بین سیستم ریشه و قسمت هوایی گیاه می‎شود که به‌دنبال آن مواد غذایی به قسمت‎های بالا نرسیده و درنتیجه کاهش رشد و کاهش وزن در گیاه مشاهده شده است (30، 31).

در برخی ارقام مطالعه‌شده ازجمله دادفر، بذور در همان مراحل اولیه رشد دچار پوسیدگی شدند. این نتیجه با نتایج مطالعات قبلی مطابقت دارد که نشان می‌دهند R. solani یکی از شایع‌ترین و فراگیرترین قارچ‌های بذر‌زاد در جهان است (32-34).

در تعدادی از ارقام بررسی‌شده ازجمله ارقام تلاش، یاقوت و دادفر علائم بیماری زودتر ظاهر شدند و گیاهچه‎ها در همان مراحل اولیه از بین رفتند. تحقیقات نشان داده‌اند این موضوع ممکن است به روابط بیمارگر - رقم مرتبط باشد و نشان‌دهندة این است که عوامل مقاومت به‌مرور اثر خود را در طول دوره رشد گیاه ظاهر می‏کنند (21). همچنین نتایج نشان دادند در شرایط بدون آلودگی، تفاوت معنی‎داری بین ارقام از نظر وزن صفات رشدی بود که قطعاً به ژنتیک ارقام مرتبط است.

شدت بیماری‌زایی در این مطالعه با برخی گزارش‌های قبلی تفاوت داشت. پژوهش‌هایی مانند Oladzad و همکاران (2019) نشان داده‌اند جدایه‌های مختلفR. solani  از نظر میزان بیماری‌زایی تفاوت معناداری دارند. این تفاوت‌ها می‌توانند ناشی از تنوع ژنتیکی جدایه‌های قارچ، شرایط محیطی و فاکتورهای فیزیولوژیکی میزبان باشد (9). نتایج مطالعه Ghoneem و همکاران (2023) نشان دادند تنوع ژنتیکی بالا در جمعیت‌هایR. solani  باعث ایجاد شدت‌های متفاوتی از بیماری در گیاهان میزبان می‌شود (2).

طبق پژوهش‎های مختلف، عوامل متعددی در مقاومت گیاهان نسبت به R. solani نقش دارند؛ ازجمله این عوامل می‎توان به بلوغ دیررس گیاه (21)، ضخامت اپی‎کوتیل (35)، فرار از بیماری و ژنتیک ارقام (35، 36)، وجود برگ‌های پهن‌تر و گسترش کندتر زخم‌ها روی گیاه (37). اشاره کرد. همچنین، تجمع لیگنین و ترکیبات فنلی در دیواره سلولی می‎تواند موجب تقویت ساختار سلولی و کاهش نفوذپذیری نسبت به قارچ شود (38، 39).

برخی مطالعات پیشنهاد کرده‌اند پوسته بذرهای تیره‌تر ممکن است در برابر ورودR. solani  مقاومت بیشتری نشان دهند؛ زیرا ساختار مکانیکی سخت‌تر و تجمع بالاتر ترکیبات فنولیک در آنها می‌تواند از نفوذ بیمارگر جلوگیری کند (9، 40)؛ با این حال در این پژوهش، چنین ارتباطی بین رنگ پوسته بذر و شدت بیماری مشاهده نشد که ممکن است به‌دلیل تفاوت در جدایه‎های قارچ یا دیگر فاکتورهای ژنتیکی میزبان باشد.

نتیجهگیری

نتایج این تحقیق نشان دادند قارچ Rhizoctonia solani یکی از عوامل اصلی پوسیدگی ریشه و طوقه لوبیا در استان لرستان است و موجب کاهش شدید رشد گیاهان در تمامی ارقام بررسی‌شده می‌شود. هیچ‌یک از ارقام لوبیای بررسی‌شده به‌طور کامل مقاوم به این بیماری نبودند؛ با این حال، رقم تلاش کمترین شدت بیماری را نشان داد. این یافته‌ها بر لزوم توسعه ارقام مقاوم و استراتژی‌های مدیریتی مؤثر برای کنترل این بیماری تأکید دارند.

سپاسگزاری

نویسندگان مراتب سپاس و قدرانی خود را از معاونت محترم
پژوهشی دانشگاه لرستان به‌دلیل تأمین بودجه لازم برای انجام این پژوهش ابراز می‎نمایند.

[1] Constriction

  • Jimenez-Lopez JC, Singh KB, Clemente A, Czubinski J, Ochatt S, Von Wettberg E, Smýkal P. Legumes for global food security-volume II. Frontiers in Plant Science. 2023 Sep 18;14:1273600. https://doi.org/10.3389/fpls.2023.1273600
  • Ghoneem KM, El-Wakil DA, Ahmed MI, Kamel HM, Rashad EM, Al-Askar AA, Elsherbiny EA, Ibrahim AA. Biodiversity of Rhizoctonia solani in Phaseolus vulgaris seeds in east delta of Egypt. Agronomy. 2023 May 8;13(5):1317. https://doi.org/10.3390/agronomy13051317
  • Machiani MA, Rezaei-Chiyaneh E, Javanmard A, Maggi F, Morshedloo MR. Evaluation of common bean (Phaseolus vulgaris) seed yield and quali-quantitative production of the essential oils from fennel (Foeniculum vulgare Mill.) and dragonhead (Dracocephalum moldavica L.) in intercropping system under humic acid application. Journal of Cleaner Production. 2019 Oct 20; 235:112-22. https://doi.org/10.1016/j.jclepro.2019.06.241
  • FAO. 2023. Crops and livestock products. [Available online at https://www.fao.org/faostat/en/#data/QCL].
  • Nasar S, Shaheen H, Murtaza G, Tinghong T, Arfan M, Idrees M. Socioeconomic evaluation of common bean (Phaseolus vulgaris) cultivation in providing sustainable livelihood to the mountain populations of Kashmir Himalayas. Plants. 2023 Jan 3;12(1):213. https://doi.org/10.3390/plants12010213
  • Valenciano JB, Casquero PA, Boto JA, Marcelo V. Evaluation of the occurrence of root rots on bean plants (Phaseolus vulgaris) using different sowing methods and with different techniques of pesticide application. New Zealand Journal of Crop and Horticultural Science. 2006 Dec 1;34(4):291-8. http://dx.doi.org/10.1080/01140671.2006.9514419


  • Guerrero-González ML, Rodríguez-Kessler M, Rodríguez-Guerra R, González-Chavira M, Simpson J, Sanchez F, Jiménez-Bremont JF. Differential expression of Phaseolus vulgaris genes induced during the interaction with Rhizoctonia solani. Plant cell reports. 2011 Aug; 30:1465-73. https://doi.org/10.1007/s00299-011-1055-5
  • Phillips Toxicity and repellency of essential oils to the German cockroach (Dictyoptera: Blattellidae) [Doctoral dissertation]. 2009. http://hdl.handle.net/10415/1942
  • Oladzad A, Zitnick-Anderson K, Jain S, Simons K, Osorno JM, McClean PE, Pasche JS. Genotypes and genomic regions associated with Rhizoctonia solani resistance in common bean. Frontiers in plant science. 2019 Jul 24; 10:956. https://doi.org/10.3389/fpls.2019.00956
  • Gonzalez Garcia V, Portal Onco M, Rubio Susan V. Review. Biology and systematics of the form genus Rhizoctonia. Spanish Journal of Agricultural Research. 2006 Mar 1; 4(1):55-9. https://sjar.revistas.csic.es/index.php/sjar/article/view/178
  • Peña PA, Steadman JR, Eskridge KM, Urrea CA. Identification of sources of resistance to damping-off and early root/hypocotyl damage from Rhizoctonia solani in common bean (Phaseolus vulgaris). Crop Protection. 2013 Dec 1; 54:92-9. https://doi.org/10.1016/j.cropro.2013.04.014
  • Valentín Torres S, Vargas MM, Godoy-Lutz G, Porch TG, Beaver JS. Isolates of Rhizoctonia solani can produce both web blight and root rot symptoms in common bean (Phaseolus vulgaris). Plant disease. 2016 Jul 8;100(7):1351-7. https://doi.org/10.1094/PDIS-11-15-1270-RE
  • Mihajlović M, Rekanović E, Hrustić J, Grahovac M, Tanović B. Methods for management of soilborne plant pathogens. Pesticidi i fitomedicina. 2017;32(1):9-24. https://doi.org/10.2298/PIF1701009M
  • Canaday CH, Wyatt JE, Bohac J, Smith JR. Field evaluation of bean cultivars and lines for resistance to Rhizoctonia, 2001. Biol. Cult. Tests. 2002 May 1;17:V02. https://www.ars.usda.gov/research/publications/publication/?seqNo115=150019
  • Shamim, Kumar, DE, Srivastava DE, Pandey PR, Singh KN. Evaluation of major cereal crops for resistance against Rhizoctonia solani under green house and field conditions. Indian Phytopathol. 2014;67(1):2-6. https://www.academia.edu/download/34322010/PhD_Screening_paper.pdf
  • Adesemoye AO, Orrell T, Kodati S. Effect of virulence of root rot pathogens and cultivar resistance on disease occurrence in dry beans. Plant Health Progress. 2018 Sep 13;19(3):237-41. https://doi.org/10.1094/PHP-06-18-0034-RS
  • Kashani SF, Bohlooli A. Comparison of the pathogenicity of some of Rhizoctonia solani isolates on some Phaseolus vulgaris Plant Protection Journal. 2013;5(1):83-96. https://www.cabidigitallibrary.org/doi/full/10.5555/20173278268 [In Persian].
  • Mohammadi S, Atashpanje M. Evaluating the Reaction of different Species of Beans to Macrophomina phaseolina, Rhizoctonia solani and Fusarium solani In Vitro. Journal of Iranian Plant Protection Research. 2022; 36(2):141-151. https://doi.org/10.22067/jpp.2022.32784.0 [In Persian].
  • Bandoni Safranin O as a rapid nuclear stain for fungi. Mycologia. 1979 Jul 1;71(4):873-4. https://doi.org/10.1080/00275514.1979.12021088
  • Sneh B, Burpee L, Ogoshi A. Identification of Rhizoctonia 1991. (pp. vi+-133). https://doi.org/10.1086/417970
  • Banniza S, Sy AA, Bridge PD, Simons SA, Holderness M. Characterization of populations of Rhizoctonia solani in paddy rice fields in Cote d'Ivoire. Phytopathology. 1999 May;89(5):414-20. https://doi.org/10.1094/PHYTO.1999.89.5.414
  • Sneh B, Jabaji-Hare S, Neate SM, Dijst G, editors. Rhizoctonia species: taxonomy, molecular biology, ecology, pathology and disease control. Springer science & business media; 2013 Jun 29. https://doi.org/10.1007/978-94-017-2901-7
  • White TJ, Bruns T, Lee S, Taylor J. Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics. In: Innis MA, Gelfand DH, Sninsky JJ, White TJ, editors. PCR Protocols: A Guide to Methods and Applications. Academic Press; 1990. p. 315–322. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-372180-8.50042-1
  • Mirzaeipour Z, Bazgir E, Zafari D, Darvishnia M. Selection and biocontrol efficiency of Trichoderma isolates against Rhizoctonia root rot and their growth promotion effects on strawberry plants. Journal of Plant Pathology. 2023 Nov;105(4):1563-79. https://doi.org/10.1007/s42161-023-01488-w
  • Karooei P, Darvishnia M, Bazgir E, Mirzaeipour Z. Investigating effect of the endophytic of two Beauveria species on growth traits and some biochemical activities of bean (Phaseolus vulgaris). Plant Protection (Scientific Journal of Agriculture). 2024;47(4):1-21. https://doi.org/10.22055/ppr.2024.47925.1760 [In Persian].
  • Sinclair JB, Dhingra OD. Basic plant pathology methods. CRC press. 2017 Nov 22; 448. https://doi.org/10.1201/9781315138138
  • Muyolo NG, Lipps PE, Schmitthenner AF. Reactions of dry bean, lima bean, and soybean cultivars to Rhizoctonia root and hypocotyl rot and web blight. Plant Disease, 1993; 77:234-238. https://doi.org/10.1094/PD-77-0234
  • Rahkhodaei E, Hamzehzarghani H, Banihashemi Z, Mostowfizadeh-Ghalamfarsa R, farrokhi nejad R. Identification and pathogenicity of Fusarium species causing bean root rot with emphasize on phylogenetic study and host range of Fusarium solani species complex in Markazi Province. Iranian Journal of Plant Pathology. 2021;57(3):217-236. https://doi.org/10.22034/ijpp.2022.545168.375 [In Persian].
  • Naik TS, Somasekhara YM, Manu TG, Raja R, Amaresh YS, Uma U. Evaluation of French bean (Phaseolus vulgaris) germplasm against root rot caused by Rhizoctonia solani. 2016;83-87. https://www.cabidigitallibrary.org/doi/full/10.5555/20193483262
  • Dubin, HJ, M. van Ginkel. The status of wheat diseases and disease research in warmer areas. In D. A. Saunders (Ed.), Wheat for the nontraditional warm areas: Proceedings of the International Conference. 1991; 125–145. CIMMYT. Retrieved from. https://www.cabidigitallibrary.org/doi/full/10.5555/19932328160
  • Yazdani Kohanstani M, Jamali Zavareh A. Study the Reaction of Some Barley Cultivars to Rhizoctonia solani AG-8, the Causal Agent of Root Rot Disease. Journal of Iranian Plant Protection Research. 2016;29(4): 490-498. https://doi.org/10.22067/jpp.v29i4.22280 [In Persian].
  • Mahmoud SY, Hosseny MH, Obiadalla AH. Seed borne fungal pathogens associated with common bean (Phaseolus vulgaris) seeds and their impact on germination. Journal of Environmental Studies. 2013 Jun 1;11(1):19-26. https://dx.doi.org/10.21608/jesj.2013.192104
  • Abu-Tahon MA, Mogazy AM, Isaac GS. Resistance assessment and enzymatic responses of common bean (Phaseolus vulgaris L) against Rhizoctonia solani damping-off in response to seed presoaking in Vitex agnus-castus L. oils and foliar spray with zinc oxide nanoparticles. South African Journal of Botany. 2022 May 1;146:77-89. https://doi.org/10.1016/j.sajb.2021.10.009
  • Aydın Rhizoctonia solani and its biological control. Türkiye Tarımsal Araştırmalar Dergisi. 2022;9(1):118-35. https://doi.org/10.19159/tutad.1004550
  • Franke MD, Brenneman TB, Holbrook CC. Identification of resistance to Rhizoctonia limb rot in a core collection of peanut germ plasm. Plant Disease. 1999 Oct;83(10):944-8. https://doi.org/10.1094/PDIS.1999.83.10.944
  • Kheyri F, Taheri P. The role of biological and chemical inducers in activating bean defense responses against Rhizoctonia solani. Physiological and Molecular Plant Pathology. 2021 Dec 1; 116:101718. https://doi.org/10.1016/j.pmpp.2021.101718
  • Green DE, Burpee LL, Stevenson KL. Components of resistance to Rhizoctonia solani associated with two tall fescue cultivars. Plant disease. 1999 Sep;83(9):834-8. https://doi.org/10.1094/PDIS.1999.83.9.834
  • Bateman DF, Van Etten HD, English PD, Nevins DJ, Albersheim P. Susceptibility to enzymatic degradation of cell walls from bean plants resistant and susceptible to Rhizoctonia solani Plant Physiology. 1969 May 1;44(5):641-8. https://doi.org/10.1104/pp.44.5.641
  • De Alwis R, Fujita K, Ashitani T, Kuroda KI. Induced monoterpene and lignin production in mechanically stressed and fungal elicited cultured Cupressus lusitanica cells. Plant Biotechnology Reports. 2009 Feb;3:57-65. https://doi.org/10.1007/s11816-008-0074-3
  • Prasad K, Weigle JL. Rhizoctonia solani in Phaseolus vulgaris. Phytopathology. 1976 Jan 1;66:342-5. https://doi.org/10.1094/Phyto-66-342