نوع مقاله : پژوهشی- فارسی
نویسندگان
1 استادیار میکروبیولوژی، واحد دامغان، دانشگاه آزاد اسلامی، دامغان، ایران
2 کارشناس ارشد میکروبیولوژی، واحد دامغان، دانشگاه آزاد اسلامی، دامغان، ایران
چکیده
کلیدواژهها
موضوعات
عنوان مقاله [English]
نویسندگان [English]
Introduction: Clostridiumbifermentansis a non pathogenbacteria and first isolated by Tissier and Martelli in 1992. This bacteria with a view to taxonomy has a close relationship with the Clostridiumsourdilli and is able to produce a wide range of metabolites such as acetic acid, lactic acid, formic acid, ethanol, butanol, acetone, carbon dioxide, nitrogen and specially hydrogen as clean source energy. The aim of this study was to isolate and molecular identify Clostridium bifermentans.
Materials and methods: With aim to isolation of Clostridium bifermentans, the anaerobic wastewater samples from Mahdishahr sewage treatment laggons cultured on asynthetic complex medium and incubated anaerobically at room temperature. Chromosomal DNA isolated from grown bacteria and the 16s rRNA gene amplified with PCR. The PCR product was sequenced and purified.
Results: Isolated bacteria from a macroscopic view on the complex media has white colonies and from a microscopic view was rod-shaped Gram-positive and had spore. of the 16s rRNA gene sequencing, isolated bacteria belong to the species Clostridium bifermentanswhich is called IRI2 strain and were recorded in gene bank with acception number KC525132.
Discussion and conclusion: In this study a strain of Clostridium bifermentans was separated and identified with 16S rRNA sequencing method. With respect to the ability of this bacteria to produce various industrial products, this bacteria is to be used especially for production of hydrogen as biogas.
کلیدواژهها [English]
مقدمه
کلستردیوم بای فرمانتانس باکتری گرم مثبت بیهوازی و دارای تحرک است که نخستین بار توسط تیسیر و مارتلی در سال 1992 جداسازی شد. این ارگانیسم به لحاظ تاکسونومی رابطه خیلی نزدیکی با کلستردیوم سوردیلی دارد (1). در اواخر سال 1962 این گونه به عنوان گونهای جدید از جنس کلستردیوم مشخص شد (2 و 3). کلستردیوم سوردیلی به عنوان یک باکتری بیماریزا و کلستردیوم بایفرمانتانس به عنوان یک باکتری غیر بیماریزا مشخص شدهاند (4). علاوه بر این، این دو باکتری میتوانند بر اساس تولید اوره نیز از هم متمایز شوند (3). منبع اصلی این باکتری آب، خاک، فاضلاب، لجن و مدفوع حیوانات است (5). این باکتری قادر به تولید طیف وسیعی از متابولیتها مانند اسید استیک، اسید لاکتیک، اسید فرمیک (6)، اتانول، بوتانول، استن (7)، کربن دی اکسید، هیدروژن و نیتروژن (3 و 8) است. با این حال تا کنون جزئیات بیشتری درباره مسیرهای متابولیکی این باکتری مشخص نشده است. از بارزترین متابولیتهای این باکتری میتوان به هیدروژن اشاره کرد. هیدروژن به عنوان یک منبع انرژی پاک است. تبدیل بیهوازی تودههای زیستی یکی از راههای دسترسی به این انرژی است. بسترهای مورد استفاده برای تولید هیدروژن عبارتند از: لجن فعال (9- 11)، زباله (11 و 12)، ملاس نیشکر (13). شیوههای متفاوتی تا کنون برای تولید هیدروژن گزارش شده است که یکی از این روشها تولید متان و سولفید هیدروژن در طی فرایند بی هوازی و سپس، تبدیل آنها به هیدروژن است (13 و 14).
تولید مناسب هیدروژن در یک راکتور بیهوازی بستگی به روشهای ویژهای برای جلوگیری از شرکت متابولیتهای ثانویه در طول واکنش دارد (15). بخش کمی از هیدروژن تولید شده در فاز گازی توسط باکتریهای اسیدوژنیک و متاژنیک است (11، 16 و 17). لجن فعال موجود در سیستمهای تصفیه فاضلاب حاوی مواد آلی زیادی است در نتیجه یک بستر بالقوه برای تولید هیدروژن به حساب میآید. استفاده از سویه کلستردیوم به ویژه کلستریدیوم بای فرمانتانس برای تولید بیوهیدروژن، دارای بیشترین راندمان و کمترین هزینه است (18- 20). هدف از این مطالعه، جداسازی و شناسایی مولکولی کلستردیوم بای فرمانتانس است.
.مواد و روشها
نمونهگیری: نمونه پساب از برکه بیهوازی تصفیه خانه فاضلاب مهدیشهر واقع در استان سمنان به وسیله نمونهگیر خاص از عمق حدود 2 متر تهیه شد و در ظروف شیشهای استریل در کنار یخ به آزمایشگاه منتقل شد.
محیط کشت و شرایط رشد: برای تهیه محیط کشت ابتدا محلولهای یاد شده در جدول 1 (21 و 22) تهیه و سپس، 4000 میلیلیتر ازمحلول A، 5 میلیلیتر از محلول B، 5 میلیلیتر از محلول C، 100 میلیلیتر از محلول D و 20 میلیلیتر از محلول E را با هم مخلوط کرده، میزان 15 گرم در لیتر به آن آگار اضافه کرده و حجم آن با آب مقطر به 5 لیتر رسانده شد. محیط آماده شده در لوله آزمایش به حجم 10 میلیلیتر تقسیم و توسط اتوکلاو استریل شد.
برای آمادهسازی نمونه برای کشت، 50 میلیلیتر نمونه پساب در 5000 دور در دقیقه به مدت 15 دقیقه سانتریفوژ شده و رسوب به دست آمده در 5/0 میلیلیتر سرم فیزیولوژی استریل سوسپانسیون شد و سپس، قبل از اینکه محیط سرد شده و ببندد، کل حجم باکتریهای سوسپانسیون شده به محیط تلقیح شد. برای ایجاد شرایط بیهوازی کامل، از دو روش اضافه کردن پارافین مایع استریل بر روی سطح محیط در درون لوله و روش بهکار بردن پیروگالول و سود 10 درصد استفاده شد. بعد از این که باکتری بر روی سطح شیبدار محیط کشت داده شد، یک در پوش پنبهای درون لوله قرار داده و دقیقا تا بالای سطح شیب دار محیط انتقال داده شد. سپس، فضای بین در پوش پنبهای تا سرلوله با کریستالهای پیروگالول پر شده و 1 میلیلیتر NaOH 10 درصد به آن اضافه شد. درب لوله با درپوش پلاستیکی محکم بسته، لوله سریع بر عکس شده و نمونهها مدت 72 ساعت در دمای 30 درجه سانتیگراد قرار داده شدند (23). سپس، از لولههای حاوی کدورت بر روی محیط یاد شده درون پلیت به شکل خطی کشت داده و در جار بیهوازی در دمای 30 درجه سانتیگراد گرماگذاری شد.
.بررسی ماکروسکوپی و میکروسکوپی کلونیهای خالص: کلونیهای خالص از نظر خواص ماکروسکوپی (شکل ظاهری کلونی) نظیر رنگ، اندازه، شکل، مشخصات کناره کلونی، برجستگی، ویژگی نوری، بوی کلونی و قوام کلونی و سپس از نظر خواص میکروسکپی با تهیه لام از هر نوع کلونی و رنگ آمیزی گرم و اسپر طبق روشهای متداول آزمایشگاه میکروبیولوژی بررسی شدند.
.بررسی باکتریهای جدا شده: با توجه به اینکه هدف انجام این پژوهش جداسازی باکتری کلستردیوم بای فرمانتانس است، آزمونهای بیوشیمیایی مربوطه بر اساس باکتریشناسی برجی (24) با انتخاب یک کلونی خالص از باکتریهای جدا شده انجام شد. بعد از اطمینان از این که باکتری جدا شده یک باسیل گرم مثبت اسپردار بی هوازی مطلق است، از آزمون اورهآز و آمین به عنوان آزمون شاخص برای تمایز بین گونههای مختلف این باکتری استفاده شد (25).
جدول 1- مواد لازم برای تهیه محیط کشت (21 و 22)
محلول A |
محلول B |
محلول C |
محلول D |
محلول E |
|||||
25/1 گرم |
CaCl2× 2H2O |
002/0% |
محلول ویتامین B12 |
3 گرم |
Na2EDTA |
50/7 گرم |
NaHCO3 |
10 گرم |
Na2S. 9H2O |
70/1 گرم |
KH2PO4 |
|
|
10/1 گرم |
FeSO4. 7H2O |
100 میلیلیتر |
آب مقطر |
100 میلیلیتر |
آب مقطر |
70/1 گرم |
NH4Cl |
|
|
190 میلیگرم |
CoCl2. 6H2O |
|
|
|
|
70/1 گرم |
KCl |
|
|
42 میلیگرم |
ZnCl2 |
|
|
|
|
50/2 گرم |
MgSO4 |
|
|
24 میلیگرم |
NiCl2. 6H2O |
|
|
|
|
4000 میلیلیتر |
آب مقطر |
|
|
18 میلیگرم |
Na2MoO4. 2H2O |
|
|
|
|
|
|
|
|
300 میلیگرم |
H3BO3 |
|
|
|
|
|
|
|
|
2 میلیگرم |
CuCl2. 2H2O |
|
|
|
|
|
|
|
|
1000 میلیلیتر |
آب مقطر |
|
|
|
|
.جداسازی DNA ژنومی و شرایط PCR: جداسازی DNA ژنومی باکتری طبق روش چن[1] و همکاران (26) با تغییراتی به این شرح انجام شد. یک کلونی از باکتری مورد نظر در داخل 5 میلیلیتر محیط کشت مایع تلقیح و به شکل بیهوازی به مدت 72 ساعت در دمای آزمایشگاه قرار داده شد تا کدورت مناسب از باکتری ایجاد شود. باکتریها بهوسیله سانتریفوژ در 12000 دور در دقیقه و به مدت 3 دقیقه از محلول رویی جدا شده و در 300 میکرولیتر محلول شماره 1 (سوکروز 15درصد، تریس 04/0 مولار، EDTA 002/0 مولار، لیزوزیم 10 میکروگرم در میلیلیتر و RNAase 5 میکروگرم در میلیلیتر) سوسپانسیون شد. سپس به مدت 15 دقیقه در 37 درجه سانتیگراد قرار داده شده تا آنزیم لیزوزیم دیواره پپتیدوگلیکانی را تجزیه کند. به سوسپانسیون سلولی 600 میکرولیتر محلول شماره 2 (NaOH یک درصد و SDS یک درصد) اضافه و به آرامی هم زده شد تا سلولها کاملا لیز شوند سپس سلولهای لیز شده یک بار با دو حجم فنل و یک بار با دو حجم کلروفرم عصارهگیری شد. برای رسوب دادن DNA دو حجم اتانل 99 درصد اضافه و به آرامی هم زده شد تا رسوب DNA تشکیل شود. رسوب با سانتریفوژ در 12000 دور در دقیقه به مدت 5 دقیقه جدا شده و با اتانل 70 درصد شستشو شد و بعد از خشک شدن آن، در 50 میکرولیتر آب مقطر حل شد.
کمیت و کیفیت DNA ژنومی جدا شده با اندازهگیری میزان جذب در طول موج 260 و 280 بررسی شد. ژن 16S rRNA بهوسیله PCR با استفاده از پرایمرهای زیر تکثیر شد.
EC16-F 5'gTT-TgA-TCC-Tgg-CTC-A--3'
EC16-R5'–TAC-CTT-gTT-ACg-ACT-TC--3'
هر 25 میکرولیتر واکنش PCR حاوی 5/2 میکرولیتر بافر10X، انواع dNTP (شرکت کوثر، ایران) با غلظت نهایی 200 میکرو مولار، پرایمرها هر کدام با غلظت 2/0 میکرو مولار، MgCl2 با غلظت 2 میلیمولار و آنزیم Taq DNA Polymerase (شرکت کوثر، ایران) با غلظت 1 واحد و 1 میکرو لیتر از DNA استخراج شده به عنوان الگو است. این واکنش با شرایط دمایی واسرشت شدن ابتدایی در 94 درجه سانتیگراد به مدت 5 دقیقه و در ادامه 40 چرخه شامل واسرشت شدن در دمای 95 درجه سانتیگراد به مدت یک دقیقه، اتصال در دمای 50 درجه سانتیگراد و گسترش در دمای 72 درجه سانتیگراد هر کدام به مدت یک دقیقه و در نهایت، 5 دقیقه در دمای 72 درجه سانتیگراد برای گسترش نهایی انجام شد. قطعه تکثیر یافته با استفاده از ژل آگاروز 1 درصد و رنگ آمیزی با اتیدیوم بروماید ارزیابی شد.
.تعیین ترادف بازی[2] و تحلیل آن: برای شناسایی کامل باکتری جدا شده، محصول PCR خالص شده توسط شرکت کرهای ماکروژن تعیین ترادف بازی شد. ترادف بازی به دست آمده با نرم افزار کروماس بررسی و سپس بعد از تصحیحهای مورد نیاز، در بانک ژن جهانی (NCBI) بلاست شد. با توجه به بلاست ترادف موجود با سکانسهای 16S rRNA موجود در بانک ژن جهانی، بیشترین شباهتها بررسی و در نهایت باکتری مورد نظر تا حد گونه شناسایی شد.
.نتایج
.ویژگیهای ماکروسکوپی و میکروسکوپی باکتریهای جدا شده: از کشت نمونه پساب در محیط کشت کمپلکس، رشد مناسبی حاصل شد (شکل 1). از لولهها به طور جداگانه نمونه برداشت کرده و رنگ آمیزی گرم انجام شد. هر دو لوله دارای مخلوطی از باکتریها به شکل میلهای گرم مثبت با قطرکمتر از یک میکرو متر، میلهای گرم منفی با کمی انحنا با قطر بیشتر از یک میکرومتر، میلهای گرم منفی و کوکوباسیل گرم منفی، بودند. در این پروژه هدف جداسازی باکتریهای میلهای گرم مثبت است بنابراین، از هر لوله بر روی پلیت محیط کشت کمپلکس به شکل خطی کشت داده شد که 3 نوع کلونی مختلف (شکل 2) با ویژگیهای زیر ایجاد شد؛کلونی شماره 1: سفید مایل به شیری، قطر حدود 7 میلیمتر، مات، کنارهها صاف، سطح صاف. کلونی شماره 2: قرمز رنگ، قطر حدود 3 میلیمتر، سطح محدب، نیمه شفاف، کنارهها صاف، کلونی شماره 3: شیری، قطر حدود 3 میلیمتر، شفاف، سطح صاف، کنارهها صاف. از کشت خالص و رنگ آمیزی گرم و اسپور مشخص شد کلونی شماره 1 از باکتریهای میلهای شکل گرم مثبت با قطر یک میکرو متر و طول حدود 2 تا 3 میکرومتر با دو انتهای گرد تشکیل شده است و دارای اسپور بیضی شکل نزدیک به انتهاست. کلونی شماره 2 از باکتریهای میلهای شکل کمی خمیده گرم منفی با قطر بیش از یک میکرومتر و فاقد اسپر است. کلونی شماره 3 باسیل گرم منفی است. هر 3 کلونی از نظر اکسیداسیون H2S مثبت بوده و کلونیهای 1 و3 متحرک بودند.
شکل 1- رشد نمونهها در محیط کشت
شکل 2- کلونیهای مختلف رشد کرده بر روی پلیت
.بررسی ویژگیهای بیوشیمیایی: با توجه به جدول ویژگیهای بیوشیمیایی جنس کلستریدیوم در کتاب برجی و نتایج آزمونهای بیوشیمیایی باکتری گرم مثبت اسپردار (جدول 2)، این باکتری متعلق به گونه کلستریدیوم بای فرمانتانس است.
جدول2- نتایج آزمونهای بیوشیمایی انجام شده، برای شناسایی باکتری
لسیتیناز |
TSI |
SIM |
مانوز |
فروکتوز |
اوره |
نیرات |
لیپاز |
لاکتوز |
مانیتول |
مانوز |
+ |
+ |
+ |
+ |
+ |
- |
- |
- |
- |
- |
- |
شکل 3- الکتروفورز DNA ژنومی باکتری
. .جداسازی DNA ژنومی: نتیجه الکتروفورز DNA ژنومی جدا شده در شکل 3 آمده است و همینطور که در شکل مشخص است نمونه جدا شده دارای باند شارپ و خالص است.
بررسی کمی و کیفی DNA کروموزومی جدا شده: جذب رقت یک به صد نمونه در طول موج 260 برابر 112/0 و در طول موج 280 برابر 064/0 است. نسبت این دو جذب برابر 75/1 است؛ بنابراین، این DNA از نظر کیفی برای PCR مناسب است. با توجه به اینکه هر OD 1 جذب در طول موج 260 برابر با 50 میکروگرم DNA در میلیلیتر است، غلظت نمونه جدا شده 560 نانوگرم در میکرولیتر میباشد.
.اختصاصیت PCR: الکتروفورز 5 میکرولیتر از محصول PCR در کنار نشانگر 1kb[3] (فرمنتاس) بر روی ژل آگاروز 1 درصد مطابق انتظار یک باند اختصاصی حدود 1500 جفت باز حاصل شد (شکل 4).
شکل 4- الکتروفورز محصول PCR. لاین 1: کنترل منفی،
لاین 2: مارکر، لاین3: محصول PCR
.نتایج تعیین ترادف محصول PCR: نتیجه تحلیل و بلاست ترادف 16S rRNA نشان داد که این باکتری به جنس کلستریدیوم متعلق بوده و 99 درصد شباهت به گونه بای فرمانتانس دارد. با توجه به عدم شباهت 100 درصد، باکتری جدا شده سویه جدیدی است و کلستریدیوم بای فرمانتانس سویه IRI2 نام گذاری و در بانک ژن جهانی با شماره KC525132 ثبت شد. درخت فیلوژنتیکی به دست آمده براساس ژن 16S rRNA (شکل5) نشان میدهد که این سویه با توجه به عدم شباهت 100 درصد در شاخه جداگانه قرار دارد، که با توجه به قرار گرفتن آن بعد از کلستردیوم دیفیسیل و کلستردیوم سوردیلیسویه جدیدی از جنس کلستردیوم است.
شکل5- درخت فیلوژنتیک ترسیم شده برای کلستردیوم بایفرمانتانس و قرارگیری آن در شاخهای جدا گانه که دلالت بر سویهای جدید دارد.
.بحث و نتیجه گیری
آبهای راکد و سیستمهای تصفیه فاضلاب به علت غنی بودن از مواد آلی باعث ایجاد شرایط مساعد رشد برای طیف وسیعی از باکتریها از جمله شیمیوارگانوتروفهای بیهوازی میشود. جنس کلستردیوم در این میان دارای وسیعترین طیف است. تنوع متابولیکی این جنس سبب شده تا این باکتری ساپروفیت، نقش اصلی در تخریب مواد آلی در طبیعت داشته باشد (27). باکتریهای متعلق به جنس کلستردیوم از منابع مختلف از جمله: خاک، کود، فاضلاب و آبهای راکد، روده انسان و حیوانات جدا شدهاند (2، 5، 28 و 29). با توجه به اینکه استخرهای بی هوازی تصفیه فاضلاب دارای شرایط بیهوازی و مقادیر بالایی مواد آلی هستند، در این مطالعه برای جداسازی کلستریدیوم بای فرمانتانساز نمونه فاضلاب استخرهای بیهوازی مهدیشهر استان سمنان استفاده شد. در مطالعات مختلف از محیطهای اختصاصی نظیر PCE، PYG، PYC، M63 و CM برای جداسازی استفاده شده است (14، 21 و 29). ولی در این مطالعه از یک محیط کمپلکس استفاده شد. بر روی این محیط یک باکتری شیمیوارگانوتروف بیهوازی، گرم مثبت، میلهای شکل متحرک و دارای اسپور جدا شد و با استفاده از روش 16S rRNA مشخص شد با 99 درصد شباهت به گونه کلستریدیوم بای فرمانتانس متعلق است. ویژگیهای ماکروسکوپی، میکروسکوپی و آزمونهای بیوشیمیایی نیز تایید کننده این نتیجه بود. این نخستین مطالعه در نوع خود در داخل کشور، در خصوص جداسازی این باکتری از سیستم تصفیه فاضلاب است. این باکتری در کشورهایی نظیر بریتانیا، ایالات متحده امریکا، آمریکای جنوبی، استرالیا و روسیه جداسازی شده است (29). در بسیاری از مطالعات نبود اکسیژن و وجود مواد آلی، عاملهای اصلی رشد برای این باکتری شیمیوارگانوتروف شمرده شده است (5). در این مطالعه نیز این مطلب تأیید شد، زیرا در عمق پایین استخرهای بیهوازی تصفیه فاضلاب از میزان اکسیژن خیلی کم و مواد آلی بالا برخوردار است. در این مطالعه یک سویه جدید از گونه کلستریدیوم بای فرمانتانس از استخرهای بیهوازی تصفیه فاضلاب جدا و به عنوان یک سویه جدید در بانک ژن جهانی به شماره دسترسی KC525132 ثبت شد؛ که نخستین پژوهش در خصوص جداسازی این گونه در ایران است. با توجه به توانایی این باکتری در تولید محصولات صنعتی مختلف نظیر: اسید استیک، اسید لاکتیک، اسید فرمیک، اتانول، بوتانول، استن، کربن دی اکسید، هیدروژن و نیتروژن، در مطالعات بعدی میتوان از آن برای تولید این فرآوردهها به ویژه تولید بیوهیدروژن استفاده کرد.